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第29章 病理学相关技术(9)

(二)获取DNA 模板

1.待检组织

(1)石蜡包埋组织:用中性甲醛溶液固定的组织,10~20μm厚切片,4~8片,置1.5ml离心管,二甲苯多次脱蜡,梯度乙醇洗涤,干燥。

(2)新鲜组织或冷冻切片:将50~100mg组织机械剪碎。

(3)体液、血液标本:参照有关分子生物学技术手册。

2.以上组织加入500μl消化缓冲液中,54℃下过夜。

消化缓冲液:Tris-HCl(pH8.0)500mmol/L

NaCl10mmol/L

EDTA10mmol/L

SDS1%

蛋白酶K200mg/ml

3.先以酚-氯仿-异戊醇(25∶24∶1)抽提一次,再以等体积氯仿-异戊醇(24∶1)抽提一次。

也可选用市售的各类DNA 抽提试剂盒,按其说明书操作。

4.取管中上清水相,加1/10体积NaAc(2mol/L,pH7.4)和2.5倍体积冰乙醇沉淀DNA,过夜,4000rpm 离心15分钟,弃上清,取沉淀溶于25μlTE 缓冲液中,-20℃保存。

TE 缓冲液

Tris-HCl 10mmol/LEDTA(pH8.0)1mmol/L(三)基本操作1.建立PCR 反应体系(表82)表82PCR 反应体系成分加样量终浓度10×缓冲液5μl1×dNTP 混合液1μl每种0.2mmol/L TaqDNA聚合酶(5μ/μl)0.25μl0.025μ/μlMgCl2(25mmol/L)3μl1.5mmol/L(续表)成分加样量终浓度10×缓冲液去离子水引物5μl加至50μl上游与下游各50pmol/L1×1μmol/L模板DNA1μmol/L说明:

①总体积为50μl。

②引物的计算:50pmol/L=16.3ng×b(b=引物碱基数)。

③模板DNA 量:最好>104拷贝。

④用于逆转录PCR(RT-PCR)的cDNA 模板,可通过RNA 逆转录获得,如同时多标本扩增,可预先将前5种成分混合。

2.先将PCR 工作液加入0.5ml的薄壁Eppendorf离心管内,然后加入模板和引物。

3.混匀,稍离心。

4.在反应液表面涂抹20~40μl矿物油。

5.反应管在PCR 仪上进行反应

常规PCR 反应循环参数为:

(1)95℃变性2分钟。

(2)此后每循环周期为:①变性:94℃,60秒。②退火:

55℃,40秒。③延伸:72℃,60秒。

(3)一般设30~35个循环,具体视实验项目而定。

6.由PCR技术衍生和发展了多项PCR相关技术(参照专业资料)。

(四)PCR 反应产物鉴定

取5μlPCR 反应产物做琼脂糖凝胶电泳,EB 染色后在紫外灯下观察或在凝胶电泳显影装置上观察:正常反应产物结果,应为预计分子量的大小的位置出现清晰的单一条带。

反应产物在-20℃下贮存,或经纯化后用于其他实验。

(五)严防交叉污染

1.严格区分不同的工作区域,一般分标本处理和DNA 提取区、溶液配置电泳区、PCR 扩增区。特别在高敏、扩增和气溶胶环境反应时,应在独立房间和超净工作台内进行。

2.操作时必须戴手套,最好戴口罩和帽子。

3.尽量使用一次性移液枪头和试管。

4.试剂、缓冲液和双蒸水预先配置并分装,每次用一份,避免重复使用。

5.有关溶液和用具需经高压消毒或紫外线照射消毒,实验用房间应定期紫外线照射消毒。

6.每次扩增实验均应同时设定阳性对照和阴性对照。三、使用PCR 技术检测基因重排(一)概述基因重排是指免疫系统Ig 和TCR 分子的基因重排事件,通过PCR 反应来诊断淋巴造血组织细胞疾病的基因结构和功能改变。

(二)试剂、方法

1DNA 提取石蜡包埋组织,新鲜组织,骨髓和外周血,棉拭子细胞,按上述方法或按操作说明书进行。

2反应体系配置先在0.5ml离心管中依次加入水、10×Buffer、MgCl2、dNTP、引物1、引物2、DNA 模板,混匀离心后滴加2滴液体石蜡,置于PCR 循环仪中,按照PCR 相应的文档程序94℃加热5分钟。当Time0:20时,按Stop 键暂停,每管加入2Taq酶后,按Start键继续扩增。

3.基因重排的基本操作基因重排的扩增包括两步,首先是IgH 的第一次扩增及TCR(基因扩增,再取IgH 的第一次扩增产物为模板,进行第二次扩增。

(1)IgH 的第一次扩增及TCR 扩增灭菌三蒸水10.5μl10×Buffer2.5μlMgCl22.5μldNTP0.5μl IgH TCRγ引物1(20pmol/μl)1μl (FR3A)(Mix1)(Mix2)引物2(20pmol/μl)1μl (LJH)(Mix3)(Mix3)DNA 模板5μlTaq酶(5U/μl)2μl(1U)(注:用灭菌水稀释)(2)IgH 的第二次扩增灭菌三蒸水15μl MgCl22.5μl 10×Buffer 2.5μl dNTP 0.5μl 引物1(20pmol/μl)1μl(FR3A)引物2(20pmol/μl)1μl(VLJH)DNA 模板0.5μl(IgH的第一次PCR扩增产物)Taq酶(5U/μl)2μl (1U)注:Taq 酶的稀释(5个反应管):1μlTaq 酶原液+9μl灭菌水。4.电泳检测(琼脂糖凝胶电泳)(1)试剂及其配制:琼脂糖、5×TBE、双蒸水、溴化乙锭液、DNA 上清缓冲液。

①5×TBE 缓冲液(储存液):27g Tris+13.75g 硼酸+10ml0.5mol/LEDTA(pH8.0),溶于300ml双蒸水中,完全溶解后定容至500ml,室温保存。

②10mg/ml溴化乙锭液:100mgEB+1ml双蒸水,避光,4℃保存。

③DNA 上清缓冲液(6×LoadingBuffer):50mg 溴酚蓝,8g 蔗糖,加蒸馏水至20ml(4℃保存)④2%琼脂糖:2g琼脂糖+100ml0.5xTBE,微波溶解3次。冷却至60℃时,加8μl10mg/ml溴化乙锭液,混匀。

(2)方法

①将凝胶托架两端用胶带封闭并水平放置在工作台上,放上梳子。

②加热溶解琼脂糖完全后,将凝胶注入托架胶板上,使凝胶厚度为5~7mm。排除气泡,待凝胶完全凝固后,撤去两端胶带。

③将托架放入电泳槽中,加入0.5×TBE 电泳缓冲液,使之没过胶面2mm,拔出梳子。

④将PCR 反应产物6μl与DNA 上样缓冲液(6×Loading Buffer)1.5μl混合,用微量加样器将混合物加入凝胶样品孔中。注意不要溢出孔外。

⑤盖上电泳槽,接通电源。样品端接负极(电泳中DNA 向正极移动)。使用80~100V 电压电泳约30分钟。待溴酚蓝降至恰当位置(约移动4cm),小心取出凝胶,紫外光下观察结果。

三、原位凋亡杂交(TUNEL)技术

原位细胞凋亡杂交是各种细胞机制启动内源性核酸内切酶使DNA 链断裂,暴露出3′-OH 末端转移酶(TdT),在DNA 多聚酶作用下,人工掺入生物素或地高辛标记的核苷酸,用卵白素或地高辛抗体携带的荧光素或辣根过氧化物酶显色,特异性地标记凋亡细胞核阳性。

(一)试剂、耗材

1.市售原位凋亡杂交试剂盒现有Roche 公司、Intergen 公司、Phoenix公司产品等。

2.标记组织细胞可用石蜡切片、细胞涂片、冰冻切片等。

3.基本试剂5×TdT 反应缓冲液、Biotin-16-dUTP、TdT 酶、卵白-荧光素缓冲液、洗涤用缓冲液。以上试剂配置见各专业技术手册。

(二)基本操作

原位凋亡杂交已有成熟的试剂盒操作说明。以经过FDA 认证的TUNEL 法为例:

1.石蜡切片脱蜡,梯度脱水。

2.蛋白酶K 孵育20分钟,21~37℃。

3.PBS漂洗2次,每次3分钟。

4.按操作说明书即时制备TUNEL 混合反应液。

5.制备无末端转移酶的对照标记溶液。

6.擦干组织周围,加50μlTUNEL 混合反应液。

7.阴性对照加对照标记液。

8.组织块盖膜(parafilm 膜)。

9.切片在湿盒内37℃恒温箱反应1小时。

10.PBS漂洗3次,每次3分钟。

11.擦干组织周围,加50μlAP 或POD 荧光抗体显色液,盖膜。

12.切片在湿盒37℃反应30分钟。

13.PBS漂洗3次。

14.加50~100μl底物反应液,室温(20℃)暗场反应10分钟。

15.PBS漂洗3次。

16.核固红(fast-Red)衬染2分钟,漂洗(注:可省略)。

17.封片(AP/甘油或POD/树脂)后镜检。

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