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第12章 脂类

脂质是组成人体组织的重要组成成分,为显示脂质,组织固定要注意:

(1)固定液中不能含有酒精、苯类、汽油和三氯甲烷等有机溶剂。

(2)一般脂质用中性缓冲福尔马林液固定即可。

(3)含磷脂组织用甲醛钙溶液为好(磷脂在一般中性缓冲福尔马林液时间较长时,容易溶掉,而在甲醛钙液中保存较好)。

一、冰冻切片油红O染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片,4~6微米。

3.试剂

100%丙二醇

0.5%油红O溶液

油红O00.5克

100%丙二醇100毫升

先加少量丙二醇到油红O中,充分搅拌后碾磨,然后逐渐加入其余的丙二醇,并不时地搅拌,缓慢加热溶液到95℃左右,决勿超过100℃。应边加热边搅拌,当温度降到40℃左右后用粗滤纸过滤,室温下过夜。玻璃滤器过滤(可加真空)。如果发现滤液变混浊,再过滤后使用。

85%丙二醇溶液

100%丙二醇85毫升

蒸馏水15毫升

Mayer氏苏木素溶液(见第4章)

甘油明胶

明胶10克

蒸馏水 60毫升

加热至明胶溶化后加入

甘油70毫升

苯酚1毫升

4.步骤

(1)将冰冻组织切片在蒸馏水中漂洗;

(2)放入纯丙二醇中2分钟;

(3)油红O液染色16小时;

(4)85%丙二醇液分化1分钟;

(5)蒸馏水漂洗2次(换水);

(6)Mayer氏苏木素液染色15~60秒钟;

(7)蒸馏水彻底漂洗几次(每次换水);

(8)用预热的甘油明胶封固。

5.结果

脂肪红色

细胞核蓝色

二、石蜡切片油红O染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片石蜡,4~10微米。

3.试剂

100%丙二醇

0.5%油红O溶液(见前法)

85%丙二醇溶液

100%丙二醇 85毫升

蒸馏水 15毫升

Mayer氏苏木素溶液

甘油明胶(见前法)

4.步骤

(1)脱蜡至蒸馏水洗;

(2)置入纯丙二醇溶液中3~5分钟;

(3)油红O液染色48~72小时;

(4)85%丙二醇溶液漂洗2分钟;

(5)Mayer氏苏木素溶液染色5分钟;

(6)流水彻底冲洗3分钟;

(7)蒸馏水漂洗2次(换水);

(8)甘油明胶封固。

5.结果

脂质红色

细胞核淡蓝色

三、冰冻切片锇酸脂肪染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片,4~6微米。

3.试剂

1%锇酸

锇酸(安瓿) 1克

新鲜双蒸馏水 100毫升

锇酸有毒,应在通风橱内用锉刀在安瓿上划痕,将安瓿掷入蒸馏水中摇动震破安瓿,小心操作,避免吸入毒性气体,安瓿应事先洗去标签,用洗液浸泡12~24小时,再用双蒸馏水冲净。

甘油明胶(见前法)

4.步骤

(1)1%锇酸置于一能密封的染色缸内,放入切片后封盖,并放在通风橱内24小时;

(2)在蒸馏水内彻底漂洗几次,每次换水,共需6小时;

(3)选用合适的复染;

(4)蒸馏水洗;

(5)甘油明胶封固。

5.结果

脂肪 黑色

6.注意事项

背景染色可用伊红;细胞核可用核固红复染。

四、组织块锇酸染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.试剂1%锇酸(见前法)

3.步骤

(1)切取固定组织2~3毫米厚一小块;

(2)流水冲洗10分钟至数小时;

(3)蒸馏水漂洗2次(换水);

(4)将组织浸入1%锇酸溶液内10~24小时;

(5)蒸馏水中充分洗涤几次(换水);

(6)常规组织脱水,透明,浸蜡包埋;

(7)石蜡切片5~6微米,烤干;

(8)二甲苯透明;

(9)中性树脂封固。

4.结果

脂肪滴黑色

五、Baker氏酸性苏木素磷脂染色法

1.固定甲醛钙溶液。

2.切片冰冻切片6~12微米。

3.试剂

甲醛钙溶液

37%甲醛 10毫升

无水氯化钙1克

蒸馏水90毫升

重铬酸钾溶液

重铬酸钾5克

氯化钙1克

蒸馏水100毫升

明胶包埋剂?穴以25克明胶加入100毫升蒸馏水中加热到60℃搅拌?雪

酸性苏木素溶液

苏木素 0.1克

蒸馏水 98毫升

1%碘酸钠 2毫升

加热煮沸,冷却后再加入

冰醋酸2毫升

硼砂铁氰化钾溶液

铁氰化钾2.5克

四硼酸钠(晶体)2.5克

蒸馏水100毫升

4.步骤

(1)将新鲜组织在甲醛钙溶液中固定6小时;

(2)将组织块(不洗)移入重铬酸钾液中18小时;

(3)将组织块再转入另一份重铬酸钾液,在60℃温箱中24小时;

(4)自来水冲洗6小时;

(5)将组织块浸渍在明胶中过夜(37℃);

(6)从温箱中取出明胶块,并放入4℃冰箱中硬固,修整组织块,切片前将组织块置于甲醛钙溶液中,室温下24小时(可更久);

(7)自来水冲洗30分钟;

(8)冰冻切片6~12微米厚度;

(9)将切片置于重铬酸钾液60℃温箱中1小时;

(10)流水冲洗5分钟;

(11)蒸馏水中漂洗半分钟;

(12)切片置于酸性苏木素液中并在37℃温箱中过夜;

(13)用蒸馏水漂洗2次(换水);

(14)硼砂铁氰化钾液中分化,37℃温箱中30~60分钟;

(15)流水冲洗5分钟;

(16)蒸馏水漂洗3次(每次换水);

(17)贴片,沥干片刻,甘油明胶或阿拉伯胶封固。

5.结果

磷脂蓝黑色

背景棕色

中性缓冲福尔马林可溶解组织内磷脂,而甲醛钙液有保护磷脂之作用。

有时磷脂能够在中性缓冲福尔马林固定石蜡包埋组织中显示出来,水化切片进行到1~4步,然后跳到9~17步。

六、Schultz氏胆固醇染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片6~10微米。

3.试剂

硫酸铁铵溶液(2.5%)

硫酸铁铵2.5克

蒸馏水100毫升

冰醋酸硫酸液

冰醋酸50毫升

浓硫酸50毫升

先将冰醋酸倒入烧杯中,周围用冰冷却。然后慢慢加入浓硫酸,并不停搅拌,用前临时制备。

4.步骤

(1)冰冻组织切片,入蒸馏水,洗干净载片贴片;

(2)吸干切片周围水分;

(3)在2.5%硫酸铁铵中处理3天;

(4)蒸馏水漂洗3次(每次换水);

(5)吸干后再晾干;

(6)滴一滴新鲜配制的冰醋酸硫酸液在切片上,并立即用盖玻片盖上;

(7)立即在显微镜下观察;

冰醋酸硫酸液容易挥发,应在数分钟内观察完毕,如用凡士林或软石蜡等封固盖片四周,可延长观察时间。

5.结果

胆固醇蓝—绿色

七、中性脂肪与酸性脂肪区别染色法(尼罗蓝染色)

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片,6~10微米。

3.试剂

尼罗蓝(Nile blue)液A

尼罗蓝(Nile blue)1克

蒸馏水99毫升

混合搅拌均匀后静放备用(不要放入冰箱保存)。

如A液染色效果不佳,可改用B液。

尼罗蓝液B

尼罗蓝0.5克

蒸馏水99毫升

混匀后滴入

硫酸1毫升

混匀后在文火上煮沸1~2小时,冷却后过滤,煮沸蒸发后,溶液仅存60~70毫升。如用回流器煮沸?熏尼罗蓝可加至1~1.5克(溶液不能放入冰箱保存)。

4.步骤

(1)冰冻切片经蒸馏水漂洗;

(2)尼罗蓝液染色浸染(60℃温箱)10~15分钟;

(3)直接在60℃,l%冰醋酸水溶液中分化数秒钟;

(4)蒸馏水漂洗2次(换水);

(5)滤纸吸干切片周围水分,待稍干;

(6)甘油明胶或阿拉伯糖胶封固。

5.结果

中性脂肪红色

酸性脂肪蓝色

复合脂肪紫色

细胞核蓝色

八、苏丹Ⅲ染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片,6~10微米。

3.试剂

苏丹Ⅲ液

苏丹Ⅲ 0.15克

60%~70%酒精 100毫升

(亦可用60%~70%酒精和丙酮等量混合)

混合,临用前过滤。

Harris氏苏木素液(亦可用明矾苏木素液)

4.步骤

(1)冰冻切片经蒸馏水漂洗;

(2)Harris氏苏木素液(亦可用明矾苏木素液取代)浸染1分钟;

(3)水洗至返蓝(如核染色过深可用0.5%盐酸酒精分化再水洗返蓝);

(4)蒸馏水漂洗2次(换水);

(5)70%酒精快洗1次(20~30秒钟);

(6)苏丹Ⅲ液浸染(于56℃温箱中)30分钟或更久;

(7)70%酒精分化数秒钟;

(8)流水洗去切片上浮色为止;

(9)蒸馏水漂洗1次;

(10)滤纸吸干切片周围水分,待稍干;

(11)甘油明胶或阿拉伯糖胶封固(短期内保存,久之褪色)。

5.结果

脂类物质橘红色

细胞核淡蓝色

九、苏丹Ⅳ染色法(猩红染色)

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片冰冻切片6~10微米。

3.试剂

苏丹Ⅳ染液

猩红2克

丙酮50毫升

70%酒精 50毫升

混合,充分溶解,用前过滤。

(亦可用60%磷酸三乙酯100毫升代替丙酮和酒精。配制时将溶液加热至100℃5分钟,边加热边搅拌,趁热用玻璃棉过滤,待冷却后再过滤1次。此液可长期保留,但用前须过滤。)

Harris氏苏木素液(或用明矾苏木素液代替)

4.步骤

(1)冰冻切片蒸馏水洗1次;

(2)Harris氏苏木素液染1分钟(亦可用明矾苏木素液);

(3)水洗至返蓝。镜检,如细胞核着色过深,可用0.5%盐酸酒精分化,再水洗返蓝。

(4)蒸馏水洗1次;

(5)70%酒精快洗1次(20~30秒钟)。如用60%磷酸三乙酯配制苏丹Ⅳ者,本步改用60%磷酸三乙酯液快洗;

(6)苏丹Ⅳ液浸染,(于56℃温箱中)30分钟或更久;

(7)70%酒精分化数秒钟(或相应改用60%磷酸三乙酯分化,同第5步);

(8)流水洗去上浮染料为止;

(9)蒸馏水洗1次;

(10)滤纸吸干切片四周水分,待稍干;

(11)甘油明胶封固。

5.结果

脂质猩红色

细胞核蓝色

十、Fischler氏醋酸铜脂肪坏死物染色法

1.固定10%甲醛钙溶液。

2.切片冰冻,6~10微米。

3.试剂

醋酸铜饱和水溶液

醋酸铜10克

蒸馏水100毫升

WeIgerl氏碳酸锂苏木素液

A液:

苏木素1克

无水酒精10毫升

B液:

碳酸锂饱和水溶液10毫升

蒸馏水90毫升

A、B液分别配制,用前临时混合。

Weigert氏硼砂—铁氰化钾液

铁氰化钾2.5克

硼砂2克

蒸馏水100毫升

4.步骤

(1)蒸馏水漂洗冰冻切片;

(2)醋酸铜饱和溶液漂染,置于37℃温箱中12~24小时;

(3)蒸馏水漂洗1次;

(4)Welgert氏碳酸锂苏木素液染色10~20分钟(染色不宜过深);

(5)蒸馏水漂洗1次;

(6)Welgert氏硼砂—铁氰化钾液分化,以镜下见红细胞颜色不再呈现深蓝色为止;

(7)蒸馏水中充分漂洗3次(换水);

(8)滤纸吸干切片周围水分,稍干;

(9)甘油明胶或阿拉伯糖胶封固。

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